Efeitos da aplicação de verniz contendo araçá (Psidium cattleianum, Sabine) sobre a microbiota cariogênica e a microdureza de superfície do esmalte de ratos submetidos a desafio cariogênico

Authors

  • Ellen Cristina Gaetti Jardim
  • Elerson Gaetti Jardim Junior
  • Christiane Marie Schweitzer
  • Ana Claudia Okamoto

DOI:

https://doi.org/10.21270/archi.v5i1.1299

Abstract

O objetivo desse estudo foi avaliar o efeito da aplicação de um verniz contendo extrato aquoso de araçá sobre a microbiota cariogênica e a microdureza de superfície do esmalte de ratos submetidos a desafio cariogênico. Inicialmente, Streptococcus mutans ATCC 35688 foram inoculados nos ratos. Após 21 dias, os 40 ratos experimentais, divididos em 4 grupos e foram submetidos (grupos II e IV) ou não (grupos I e III) à remoção de suas glândulas salivares maiores e uso de dieta cariogênica NIH 2000 (todos os grupos), bem como à aplicação do verniz contendo o extrato vegetal (grupos I e II) ou apenas a base do verniz (grupo III e IV). O biofilme foi coletado semanalmente para avaliação da população de cocos cariogênicos. Após 56 dias, os animais foram sacrificados. Os maxilares foram inicialmente examinados segundo os critérios de Keyes, e os dentes foram submetidos à avaliação de microdureza de superfície do esmalte. A participação de estreptococos do grupo mutansno biofilme foi avaliada por meio de cultura em ágar MSBS, após incubação em condições adequadas. A análise dos dados referentes às contagens microbianas foi realizada por ANOVA, enquanto a análise da microdureza do esmalte foi submetida à análise pelo teste de Tukey, ambas com nível de significância de 5%. Verificou-se que o esmalte dos animais que receberam o verniz com extrato de planta apresentou menores populações de cocos cariogênicos e microdureza de superfície do esmalte mais elevada do que o dos animais que receberam apenas a base do verniz.

Descritores: Agentes de Controle de Microrganismos; Psidium; Streptococcus mutans; Esmalte Dentário; Teste de Dureza.

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References

García-Cortés JO, Medina-Solí CE, Loyola-Rodriguez JP et al. Dental caries`s experience, prevalence and severity in Mexican adolescents and young adults,” Rev Salud Pública. 2009;11(1):82-91.

Smith EG, Spatafora GA. Gene regulation in S. mutans: complex control in a complex environment. J Dent Res. 2012;91(2):133-41.

Costalonga M, Herzberg MC. The oral microbiome and the immunobiology of periodontal disease and caries. Immunol Lett. 2014;162(2 Pt A):22-38.

Smith DJ, Mattos-Graner RO. Secretory immunity following mutans streptococcal infection or immunization. Curr Top Microbiol Immunol. 2008;319:131-56.

Bennadi D, Reddy V, Kshetrimayum N. Influence of genetic factor on dental caries. Ind J Res Pharm Biotech. 2014;2(3):1196-1207.

Takashima Y, Fujita K, Ardin AC, Nagayama K, Nomura R2, Nakano K, Matsumoto-Nakano M. Characterization of the dextran-binding domain in the glucan-binding protein C of Streptococcus mutans. J Appl Microbiol. 2015;119(4):1148-57.

Pienihäkkinen K, Jokela J. Clinical outcomes of risk-based caries prevention in preschool-aged children. Commun Dent Oral Epidemiol. 2002;30(2):143-50.

Thenisch NL, Bachmann LM, Imfeld T, Leisebach Minder T, Steurer J. Are mutans streptococci detected in preschool children a reliable predictive factor for dental caries risk? A systematic review. Caries Res. 2006;40(5):366-74.

Langendijk-Genevaux PS, Grimm WD, van der Hoeven JS. Sulfate-reducing bacteria in relation with other potential periodontal pathogens. J Clin Periodontol. 2001;28(12):1151-7.

Narvai PC, Frazão P, Roncalli AG, Antunes JLF. Cárie dentária no Brasil: declínio, polarização, iniquidade e exclusão social. Rev Panam Salud Publica. 2006;19(6):385-93.

Tanner T, Kämppi A, Päkkilä J, Patinen P, Rosberg J, Karjalainen K, Järvelin M-R, Tjäderhane L, Anttonen V. Prevalence and polarization of dental caries among young, healthy adults: cross-sectional epidemiological study. Acta Odontol Scand. 2013;71(6):1436-42.

Azizi A, Aghayan S, Zaker S, Shakeri M, Entezari N, Lawaf S. In vitro effect of zingiber officinale extract on growth of Streptococcus mutans and Streptococcus sanguinis. Int J Dent. 2015. Doi 10.1155/2015/489842

Cheng L, Li J, He L, Zhou X. Natural products and caries prevention. Caries Res. 2015;49(Suppl1):38-45.

Brighenti FL, Luppens SBI, Delbem ACB, Deng DM, Hoogenkamp MA, Gaetti-Jardim Jr E, Dekker HL, Crielaard W, ten Cate JM. Effect of Psidium cattleianum leaf extract on Streptococcus mutans viability, protein expression and acid production. Caries Res. 2008;42(2):148-54.

Brighenti FL, Gaetti-Jardim Jr E, Danelon M, Evangelista GV, Delbem ACB. Effect of Psidium cattleianum leaf extract on enamel demineralisation and dental biofilm composition in situ. Arch Oral Biol. 2012;57(8):1034-40.

Prabu GR, Gnanamani A, Sadulla S. Guaijaverin - a plant flavonoid as potential antiplaque agent against Streptococcus mutans. J Appl Microbiol. 2006;101(2):487-95.

Gaetti-Jardim EC, Gaetti-Jardim Jr E, Schweitzer CM, Okamoto AC. Atividade inibitória do verniz de araçá (Psidium cattleianum Sabine) sobre amostras de Streptococcus mutans “in vitro”. Arch Health Invest. 2015;4(6):54-60.

Gold OG, Jordan HV, Van Houte J. A selective medium for Streptococcus mutans. Arch Oral Biol. 1973;18(11):1357-64.

Hamada S, Ooshima T, Torii M, Imanishi H, Masuda N, Sobue S, et al. Dental caries induction in experimental animals by clinical strains of Streptococcus mutans isolated from Japanese children. Microbiol Immunol. 1978;22(6):301-4.

Peres RC, Coppo LC, Franco EM, Volpato MC, Groppo FC, Rosalen PL. Cariogenicity of different types of milk: an experimental study using animal model. Braz Dent J. 2002;13(1):27-32.

Bowen W, Madison KM, Young DA. The effect of desalivation on coronal and root surface caries in rats. J Dent Res. 1988;67(1):21-3.

Möller AJ. Microbiol examination of root canals and periapical tissues of human teeth: methodological studies. Odontol Tidskr. 1966;74(Suppl):1-138.

Shinoda H. Effect of long-term administration of fluoride on physico-chemical properties of the rat incisor enamel. Calcif Tissue Res. 1975;18(2):91-100.

Gushi LL, Soares MC, Forni TIB, Vieira V, Wada RS, Sousa MLR. Cárie dentária em adolescentes de 15 a 19 anos de idade no estado de São Paulo, Brasil, 2002. Cad Saúde Pública. 2005;21(5):1383-91.

Martins RJ, Garbin CAS, Garbin AJI, Moimaz SAS, Saliba O. Declínio da cárie em um município da região noroeste do estado de São Paulo, Brasil, no período de 1998 a 2004. Cad Saúde Pública 2006;22(5):1035-41.

Landry RM, An D, Hupp JT, Singh PK, Parsek MR. Mucin-Pseudomonas aeruginosa interactions promote biofilm formation and antibiotic resistance. Mol Microbiol. 2006;59(1):142-51.

Marsh PD. Dental Plaque as a microbial biofilm. Caries Res. 2004;38(3):204-11.

Guggenheim B, Guggenheim M, Gmür R, Giertsen E, Thurnheer T. Application of the Zürich biofilm model to problems of cariology. Caries Res. 2004;38(3):212–22.

Bruschi ML, Panzeri H, Freitas O, Lara EHG, Gremião MPD. Sistemas de liberação de fármaco intrabolsa periodontal. Rev Bras Cienc Farm. 2006;42(1):29-47.

Leitão DPS, Silva Filho AA, Polizello ACM, Bastos JK, Spadaro ACC. Comparative evaluation of in-vitro effects of Brazilian green propolis and Baccharis dracunculifolia extracts on cariogenic factors of Streptococcus mutans. Biol Pharm Bull. 2004;27(11):1834-9.

Takarada K, Kimizuka R, Takahashi N, Honma K, Okuda K, Kato T. A comparison of the antibacterial efficacies of essential oils against oral pathogens. Oral Microbiol Immunol. 2004;19(1):61-4.

Ozaki F, Pannuti CM, Imbronito AV, Pessotti W, Saraiva L, Freitas NM, et al. Efficacy of a herbal toothpaste on patients with established gingivitis – a randomized controlled tria. Braz Oral Res. 2006;20(2):172-7.

Otake S, Makimura M, Kuroki T, Nishihara Y, Hirasawa M. Anticaries effects of polyphenolic compounds from Japanese green tea. Caries Res. 1991;25(6):438-43.

Landucci LF, Oliveira LD, Brandão EHS, Koga-Ito CY, Gaetti-Jardim Jr E, Jorge AO. Efeitos de Coffea arabica sobre a aderência de Streptococcus mutans à superfície de vidro. Ciênc Odontol Bras. 2003;6(3):58-64.

Matsumoto M, Tsuji M, Okuda J, Sasaki H, Nakano K, Osawa K, et al.. Inhibitory effects of cacao bean husk extract on plaque formation in vitro and in vivo. Eur J Oral Sci. 2004;112(3):249-56.

Gaetti-Jardim Jr E, Landucci LF, Okamoto AC, Akeshigue H. Antimicrobial activity of plants infusions on oral fusobacteria and their adherence to human erythrocytes. Arch Health Invest. 2013;2(1):3-9.

Keyes PH. Dental caries in the molar teeth of rats- I. Distribution of lesions induced by high-carbohydrate low-fat diets. J. Dent Res. 1958;37(6):1077-87.

Keyes, P.H. Dental caries in the molar teeth of rats- II. A method for diagnosing and scoring several types of lesions simultaneously. J. Dent Res. 1958;37(6):1088-99.

Daglia M, Tarsi R, Papetti A, Grisoli P, Dacarro C, Pruzzo C, et al. Antiadhesive effect of green and roasted coffee on Streptococcus mutans adhesive properties on saliva-coated hydroxyapatite beads. J. Agric Food Chem. 2002;50(5):1225-9.

Medina AL, Haas LIR, Chaves FC, Salvador M, Zambiazi RC, Silva WP, Nora L, Rombaldi CV. Araça (Psidium cattleianum Sabine) fruit extracts with antioxidant and antimicrobial activities and antiproliferative effect on human cancer cells. Food Chem. 2011;128 (4):916-22.

Published

2016-03-30

How to Cite

Gaetti Jardim, E. C., Gaetti Jardim Junior, E., Schweitzer, C. M., & Okamoto, A. C. (2016). Efeitos da aplicação de verniz contendo araçá (Psidium cattleianum, Sabine) sobre a microbiota cariogênica e a microdureza de superfície do esmalte de ratos submetidos a desafio cariogênico. ARCHIVES OF HEALTH INVESTIGATION, 5(1). https://doi.org/10.21270/archi.v5i1.1299

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Artigos